EFEK INFUSUM DAUN KENIKIR (Cosmos caudatus) TERHADAP PERUBAHAN MORFOLOGI DAN TINGKAT KEMATIAN LARVA Aedes aegypti
Abstrak
Penyakit Demam Berdarah Dengue (DBD) menjadi masalah kesehatan serius di Indonesia, disebabkan oleh nyamuk Aedes aegypti. Resistensi nyamuk terhadap insektisida kimia meningkat akibat penggunaan yang tidak tepat, sehingga diperlukan alternatif pengendalian vektor, termasuk larvasida alami dari tanaman. Kenikir (Cosmos caudatus) adalah salah satu tanaman yang berpotensi sebagai larvasida, berkat kandungan minyak atsiri dan metabolit sekundernya. Penelitian ini bertujuan menguji pengaruh infus daun kenikir terhadap kematian larva Aedes aegypti dengan variasi konsentrasi dan menentukan konsentrasi efektif sebagai LC50, yaitu yang membunuh 50% larva. Populasi dalam penelitian ini adalah seluruh spesies kenikir yang berasal dari perkebunan Manoko, Lembang, dengan sampel berupa daun kenikir spesies Cosmos caudatus. Sebanyak 315 larva Aedes aegypti diperoleh dari Loka Litbang dan digunakan sebagai objek penelitian. Metode true eksperimen digunakan dengan desain Static Group Comparison, melibatkan kelompok eksperimen dan kontrol. Objek penelitian adalah larva Aedes aegypti instar III yang diuji dengan infus kenikir pada konsentrasi 25%, 35%, 45%, 55%, dan 65%. Hasil menunjukkan bahwa konsentrasi minimum efektif adalah 25%, sedangkan uji probit mengindikasikan konsentrasi 28% sebagai LC50 dalam 24 jam. Kematian larva disebabkan oleh kerusakan selaput luar jaringan, menunjukkan efek ekstrak kenikir, bukan karena kekurangan makanan.
Artikel teks lengkap
Referensi
2. kementerian kesehatan. Kasus DBD Meningkat, Kemenkes Galakkan Gerakan 1 Rumah 1 Jumantik (G1R1J) – Sehat Negeriku. kemenkes. Published 2022. Accessed October 3, 2022. https://sehatnegeriku.kemkes.go.id/baca/umum/20220615/0240172/kasus-dbd-meningkat-kemenkes-galakkan-gerakan-1-rumah-1-jumantik-g1r1j/
3. Fajarani R, Adi Ms, Gambaran Demam Berdarah Dengue Kota Semarang Tahun 2014-2019," Jurnal Ilmiah Mahasiswa, 2020;8(1). Accessed October 24, 2022. http://ejournal3.undip.ac.id/index.php/jkm
4. Poltep K, Phadungsombat J, Nakayama EE, et al. Genetic Diversity of Dengue Virus in Clinical Specimens from Bangkok, Thailand, during 2018–2020: Co-Circulation of All Four Serotypes with Multiple Genotypes and/or Clades. Trop Med Infect Dis 2021. 2021;6(3):162. doi:10.3390/TROPICALMED6030162
5. Barrows NJ, Campos RK, Liao KC, et al. Biochemistry and Molecular Biology of Flaviviruses. Chem Rev. 2018;118(8):4448-4482. doi:10.1021/ACS.CHEMREV.7B00719/ASSET/IMAGES/MEDIUM/CR-2017-00719R_0005.GIF
6. Caraballo GI, Rosales R, Viettri M, Ding S, Greenberg HB, Ludert JE. The dengue virus non-structural protein 1 (NS1) interacts with the putative epigenetic regulator DIDO1 to promote flavivirus replication. bioRxiv. 2021;7(3):1-13. doi:10.1101/2021.09.01.458517
7. Hadinegoro SR, Arredondo-García JL, Capeding MR, et al. Efficacy and Long-Term Safety of a Dengue Vaccine in Regions of Endemic Disease. N Engl J Med. 2015;373(13):1195-1206. doi:10.1056/NEJMOA1506223/SUPPL_FILE/NEJMOA1506223_DISCLOSURES.PDF
8. Li L, Lok SM, Yu IM, et al. The flavivirus precursor membrane-envelope protein complex: Structure and maturation. Science (80- ). 2008;319(5871):1830-1834. doi:10.1126/SCIENCE.1153263/SUPPL_FILE/LI-L.SOM.PDF
9. Dias RS, Teixeira MD, Xisto MF, et al. DENV-3 precursor membrane (prM) glycoprotein enhances E protein immunogenicity and confers protection against DENV-2 infections in a murine model. https://doi.org/101080/2164551520201826798. 2020;17(5):1271-1277. doi:10.1080/21645515.2020.1826798
10. Neves-Martins TC, Mebus-Antunes NC, Caruso IP, Almeida FCL, Da Poian AT. Unique structural features of flaviviruses’ capsid proteins: new insights on structure-function relationship. Curr Opin Virol. 2021;47:106-112. doi:10.1016/J.COVIRO.2021.02.005
11. Kementerian Kesehatan. Demam Berdarah mengintai. kemenkes. Published 2024. Accessed September 30, 2024. https://sehatnegeriku.kemkes.go.id/baca/mediakom/20240521/2845637/mediakom-165/
12. Demirak MŞŞ, Canpolat E. Plant-Based Bioinsecticides for Mosquito Control: Impact on Insecticide Resistance and Disease Transmission. Insects. 2022;13(2). doi:10.3390/INSECTS13020162
13. Dinas Kesehatan Jakarta. Fakta-Fakta Penting Fogging. Published 2022. Accessed October 7, 2024. https://dinkes.jakarta.go.id/berita/read/fakta-fakta-penting-fogging
14. Aswi, aswi; sukarna S. Pemodelan bayesian spasial conditional autoregressive (car) pada kasus demam berdarah dengue di indonesia | Jurnal MSA ( Matematika dan Statistika serta Aplikasinya). Jurnal Matematika dan Statistika dan aplikasinya. doi:https://doi.org/10.24252/msa.v10i1.29113
15. Ferede G, Tiruneh M, Abate E, et al. Distribution and larval breeding habitats of Aedes mosquito species in residential areas of northwest Ethiopia. Epidemiol Health. 2018;40(40). doi:10.4178/EPIH.E2018015
16. Kolo SM. Efektivitas Biolarvasida Ekstrak Daun Sirsak Dan Serai wangi Terhadap Larva Nyamuk Aedes aegypti. J Saintek Lahan Kering. 2018;1(1):13-16. doi:10.32938/SLK.V1I1.441
17. Choi L, Majambere S, Wilson AL. Larviciding to prevent malaria transmission. Cochrane Database Syst Rev. 2019;2019(8). doi:10.1002/14651858.CD012736.PUB2
18. Wasilah SZ, Setiawan BB. Larvicidal Effect of kenikir Leaves Extract (Cosmos caudatus Kunth.) Against Aedes aegypti L. Larvae Vector of Dengue Hemorrhagic Fever. Published online November 1, 2019:254-260. doi:10.2991/ICHS-18.2019.37
19. Aminu NR, Soetjipto H, Kristijanto AI. Larvicide effect of tagetes erecta extract hexane and acetone fraction on instar III and 4 aedes aegypti mosquito larvae. J kim mulawarman. 2023;20(2):64-69. doi:10.30872/JKM.V20I2.772
20. Sayono S, Anwar R, Sumanto D. Larvicidal activity evaluation of the chemical compounds isolated from n-hexane extract of Derris elliptica root against the Temephos-susceptible strain of Aedes aegypti larvae. Biodiversitas J Biol Divers. 2022;23(2):757-764. doi:10.13057/BIODIV/D230221
21. Matsuura HN, Fett-Neto AG. Plant Alkaloids: Main Features, Toxicity, and Mechanisms of Action. Plant Toxins. Published online 2015;12(1):1-15. doi:10.1007/978-94-007-6728-7_2-1
22. Muniandy PD, Riswari SF, Ruchiatan K. Larvicidal Activity of Citrus aurantifolia Decoction against Aedes aegypti Larvae. Althea Med J. 2020;7(1):35-39. doi:10.15850/AMJ.V7N1.1814
23. Laojun S, Chaiphongpachara T. Comparative study of larvicidal activity of commercial essential oils from aromatic rosemary, vanilla, and spearmint against the mosquito Aedes aegypti. Biodiversitas J Biol Divers. 2020;21(6):2383-2389. doi:10.13057/BIODIV/D210607
Penulis

Artikel ini berlisensi Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.